病理标本如何“保鲜”

人体组织一旦离体，血氧供应停止，组织中的蛋白质、核酸等成分开始降解，进而发生组织自溶。所以病理标本进行固定的目的，是为防止细菌的腐蚀和组织的自溶，保存细胞固有的物质，能凝固或沉淀细胞内或组织内的糖元等，标本离体后及时切开和固定，保证后续检查结果的准确性和真实性，指导临床治疗。

如何进行组织固定？

1.固定要及时

组织一定要新鲜，离体后立即投入固定液，标本从离体到固定的时间不宜超过半个小时。

2.固定的容器要足够大

采用广口、平底及有盖的容器，以利于取出和保持组织原形。

3.固定液的量要足

病理标本使用10%中性甲醛缓冲液固定，固定液的量不少于组织体积的3-5倍(要求确保标本全部置于固定液中)，特殊标本除外。

4.固定瓶签或胶带要清晰

必须贴有该例患者的姓名、性别、年龄和部位等资料。

5.固定的时间

空腔标本和大的实质性脏器标本必须及时切开，固定过夜，第二天取材。

新鲜标本，应该剖开固定12—24小时后再取材。

大标本取材后在室温下需再固定4—6小时。小标本取材后需在室温下再固定3—4小时。

为什么要进行组织固定？

1.固定是病理制片过程中最重要的一步，因为这是不可逆的，也就是无法补救的。组织只有经过固定，才能完成随后的一系列制作，直至切片的最终完成。

2.如果组织固定不佳，造成组织腐烂、抗原失活，将影响切片质量，也将导致诊断困难或无法诊断，甚至影响免疫组化及基因检测结果准确性。因此及时、剖开、足量固定液的固定非常重要。

3.规范化固定处理后的标本，染色红蓝分明，结构清楚，有利于病理医生判读，做出准确诊断。而且可以保留组织细胞内的遗传物质，为精准治疗靶向药物的选择提供可靠的基因检测结果。